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Advertidos errores en los precios públicos y los temarios de las plazas 3LA94815 y 3LA94813 relacionadas en los procesos selectivos 3LA94815 y 3LA94813, y en cumplimiento de lo dispuesto en el artículo 105.2 del la Ley 30/1992, de Régimen Jurídico de las Administraciones Públicas y del Procedimiento Administrativo Común, este Rectorado, en uso de sus competencias, resuelve ordenar la publicación en el Boletín Oficial de la Junta de Andalucía la corrección de errores conforme a los siguientes términos:

Donde dice: 3.6 Derechos de examen.-Los derechos de examen serán de 35 euros y se ingresarán en Unicaja cuenta corriente número 2103 0146 95 0030028625, bajo el nombre de «Universidad de Málaga. Pruebas Selectivas P.A.S.». En la solicitud deberá figurar el sello de la mencionada entidad de ahorro o en su caso el comprobante bancario acreditativo del pago de los derechos y cuya falta determinará la exclusión automática y definitiva del aspirante.

Debe decir:

3.6 Derechos de examen.-Los derechos de examen serán de 18 euros y se ingresarán en Unicaja cuenta corriente número 2103 0146 95 0030028625, bajo el nombre de «Universidad de Málaga. Pruebas Selectivas P.A.S.». En la solicitud deberá figurar el sello de la mencionada entidad de ahorro o en su caso el comprobante bancario acreditativo del pago de los derechos y cuya falta determinará la exclusión automática y definitiva del aspirante.

Donde dice:

TEMARIOS PARA EL PROCESO SELECTIVO «3LA948»

Plaza: «3LA94815»

Categoría: Técnico Especialista de Laboratorio

Destino: S.G.I -Microscopía Medicina

1. Estatutos de la Universidad de Málaga. 2. Convenio Colectivo del Personal Laboral de las Universidades Públicas de Andalucía vigente, excluidas las categorías profesionales declaradas a extinguir y los anexos I y IV 3. Ley de Prevención de Riesgos Laborales (capítulos I, III, IV y V). 4. Principios básicos de microscopio óptico y de epifluorescencia; conceptos, partes y métodos de trabajo. 5. Preparación de muestras para el microscopio óptico, de fluorescencia y microscopio láser confocal. 6. Utilización de fluorocromos para su uso en microscopio de epifluorescencia y confocal. 7. Principios básicos de la microscopía láser confocal; conceptos, partes y métodos de trabajo. 8. Captación de imágenes y análisis en 2D. 9. Estudio de la colocalización y análisis en 3D. 10. Manejo de imágenes digitales, en plataformas PC y Apple, para retoques, montajes fotográficos, impresiones, etc. 11. Conocimientos sobre redes informáticas, a nivel de usuario, para la transferencia de ficheros. 12. Filmación de diapositivas, utilizando un sistema Polaroid Digital Palette. 13. Grabaciones de CD-R y sistemas de almacenamiento de datos.

Debe decir:

TEMARIOS PARA EL PROCESO SELECTIVO «3LA94815»

Plaza: «3LA94815»

Categoría: Técnico Especialista de Laboratorio

Destino: S.G.I -Microscopía Medicina

1. Estatutos de la Universidad de Málaga. 2. Convenio Colectivo del Personal Laboral de las Universidades Públicas de Andalucía vigente, excluidas las categorías profesionales declaradas a extinguir y los anexos I y IV. 3. Ley de Prevención de Riesgos Laborales (capítulos I, III, IV y V). 4. Introducción a las técnicas histológicas. Microscopio óptico y electrónico. Fundamentos y tipos. 5. Preparación de tejidos para microscopia óptica. Obtención de muestras. Estudio de tejidos «in vivo e in vitro». Fijación. Tipos de fijadores y sus aplicaciones. Deshidratación. Métodos de inclusión en parafina. Procedimientos automático y manual. Otros medios de inclusión. 6. Obtención de cortes. Vibratomo. Microtomo. Criostato. Métodos generales de tinción. Fundamentos. Tipos. 7. Métodos Histoquímicos no enzimáticos y enzimáticos. 8. Inmunohistoquímica. Fundamentos teóricos. Tipos de métodos inmunohistoquímicos. Preservación y preparación de tejidos. 9. Procesamiento de muestras para ME. Fijación. Deshidratación e inclusión. Medios de inclusión. Obtención de bloques. 10. Sección y contraste. Cortes semifinos. Cortes ultrafinos. Ultramicrotomo. Métodos de contraste. 11. Técnicas especiales de ME. Aplicaciones. 12. Histometría y análisis de imagen. Fundamentos. Métodos morfométricos y estereológicos. Aplicaciones al estudio de células y tejidos. 13. Microfotografía. Fundamento. Obtención de imágenes con técnicas convencionales. Digitalización. 14. Métodos específicos para Neurohistología.

Donde dice:

TEMARIOS PARA EL PROCESO SELECTIVO «3LA948»

Plaza: «3LA94813»

Categoría: Técnico Especialista de Laboratorio

Destino: S.G.I -Anatomía Patológica

1. Estatutos de la Universidad de Málaga. 2. Convenio Colectivo del Personal Laboral de las Universidades Públicas de Andalucía vigente, excluidas las categorías profesionales declaradas a extinguir y los anexos I y IV 3. Ley de Prevención de Riesgos Laborales (capítulos I, III, IV y V). 4. Métodos y técnicas de fijación, procesamiento, corte y tinción de muestras citohistológicas humanas para microscopía óptica convencional 5. Técnicas Histoquímicas: No-enzimáticas: PAS, Tricrómico, Perles, Van Gieson, azul alcian, etc. 6. Técnicas Histoquímicas: Enzimáticas: ATP-asa, etc... 7. Microscopía Electrónica: Proceso de fijación e inclusión de células y tejidos humanos. Ultramicrotomía. 8. Microscopía Electrónica: Características estructurales de los orgánulos celulares. 9. Utilidades de la Microscopía electrónica en tumores sólidos. 10. Inmunohistoquímica. 11. Citometría de imagen 12. Citometría de flujo. 13. Hibridación in situ (HJS/FISH) 14. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR)

Debe decir:

TEMARIOS PARA EL PROCESO SELECTIVO «3LA94813»

Plaza: «3LA94813»

Categoría: Técnico Especialista de Laboratorio

Destino: S.G.I -Anatomía Patológica

1. Estatutos de la Universidad de Málaga. 2. Convenio Colectivo del Personal Laboral de las Universidades Públicas de Andalucía vigente, excluidas las categorías profesionales declaradas a extinguir y los anexos I y IV 3. Ley de Prevención de Riesgos Laborales (capítulos I, III, IV y V). 4. Métodos y técnicas de fijación, procesamiento y tinción de muestras citológicas humanas para microscopia óptica convencional. 5. Infraestructura y organización de un laboratorio de anatomía patológica/patología humana. 6. Métodos y técnicas de fijación, procesamiento, corte y tinción de muestras histológicas humanas para microscopia óptica convencional. 7. Técnicas histoquímicas:

No-enzimáticas: PAS, tricrómico, Perls, van Gieson, azul alcian, etc...

Enzimáticas: ATP-asa, etc...

8. Microscopia electrónica. Proceso de fijación e inclusión de células y tejidos humanos. Ultramicrotomía. Características estructurales de los orgánulos celulares. Utilidades de la microscopia electrónica en tumores sólidos

9. Inmunohistoquímica. Fundamento teórico de las técnicas inmunohistoqímicas. Recogida de muestras cito-histológicas. Desenmascaramiento antigénico: concepto y métodos. Anticuerpos: características. Dilución de un anticuerpo. Métodos de visualización. Controles de calidad metodológica. Aplicaciones de la inmunohistoquímica en patología neoplasia 10. Citometria de imagen. Fundamentos básicos del proceso digital de imágenes microscópicas. Recogida de muestras citohistológicas. Equipamiento. Secuencia de tareas. Cuantificación de parámetros morfométricos: globales, objeto y densitométricos. Cuantificación de ADN y parámetros de proliferación celular. Cuantificación de texturas nucleares. Cuantificación de marcadores inmunohistoquímicos. Controles de calidad metodológica. Utilidad y limitaciones de la citometría de imagen en patología neoplásica. 11. Citometría de flujo. Fundamento teórico de la citometría de flujo. Recogida de muestras cito-histológicas. Componentes de un citómetro de flujo. Estudio del ciclo celular (contenido de ADN en cada fase del ciclo). Estudio del fenotipo celular. Utilidad y limitaciones de la citometría de flujo en patología neoplásica. 12. Hibridación in situ (HIS/FISH). Principios y condiciones de hibridación. Recogida de muestras cito-histológicas. Sistemas de detección fluorescentes y enzimáticos. Detección de alteraciones cromosómicas numéricas. Utilidad práctica en tumores sólidos. 13. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Principios teóricos de la PCR. Recogida de muestras cito-histológicas. Extracción de ADN. Reacción de amplificación: principios y tipos. Electroforesis en geles de agarosa y poliacrilamida. Interpretación de resultados. Aplicaciones en patología tumoral

14. Otras técnicas especiales en patología humana (arrays/matrices tisulares y génicos, etc). Sistemas de control y calidad técnica en citopatología e histopatología

Málaga, 5 de mayo de 2006.-La Rectora, Adelaida de la Calle Martín.